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    猪链球菌的分离与鉴定



    录入时间:2011-1-26 11:06:34 来源:中国论文下载中心

    摘 要
    2000年4月,陕西省岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎和败血症。无菌采取患关节炎猪的关节液和患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结各8份病料,并对这16份病料进行病原菌分离试验、血清学鉴定、致病力试验、保护力试验、细菌回收试验、药敏试验。结果表明:该病原菌为2型猪链球菌,引起关节炎的猪链球菌较引起败血症的猪链球菌致病力弱;该菌对头孢菌素、青霉素高度敏感。
     
    关键词:猪链球菌 分离鉴定
    前 言
    猪链球菌(Streptococcosis suis)是猪的一种重要疾病,养猪业发达国家如美、英、荷及爱尔兰等常有本病发生。我国于1958年就有猪链球菌病的报道,1976年我国南方几省曾一度广泛流行,给我国养猪业带来了很大危害。
    猪链球菌截止到目前已发现的荚膜型已超过30种[1]。我国于1995年首例鉴定证实2型猪链球菌在我国的存在 [2]。猪链球菌可致2—6周龄仔猪败血症、脑膜炎、关节炎及支气管肺炎等[3-7]。病猪和带菌猪是本病的重要传染源,病猪的鼻液、尿液、血液、肌肉、内脏和关节内均可检出病原体。未经无害处理的病死猪肉、内脏及废弃物是散播本病的重要原因,呼吸道是本病的主要传播途径。本病一年四季均可发生,但以4—10月份发生较多。本病常为地方性流行性,多呈败血性。短期波及全群,如不进行防治,则发病率、病死率很高,慢性常为地方性散发性传染。
    2000年4月,岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎及败血症,多为2—6周龄仔猪。无菌采取关节炎病猪的关节液及败血症病猪的肝、脾、肺及肠系膜淋巴结,经实验室分离鉴定,证实为2型猪链球菌。现将分离鉴定结果报告如下。
     
    1. 实验材料
     
    1. 1病料 无菌采取岐山县种猪繁育场患关节炎病猪的关节液8份,编号为1—8号,无菌采取患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结8份,编号为9—16号。
     
    1. 2试剂 试验所用的各种糖均购自上海化学试剂二厂,批号自95—98年不等。
    1. 3培养基 绵羊鲜血平板、匹克氏增菌液、10ml/L猪血清肉汤及各种糖培养基按常规方法制备[8]。
    1. 4血清学试验 猪链球菌诊断血清与平板凝集抗原均购自中国兽药鉴察所,批号为990705。
    1. 5药敏纸片 购自浙江省军区后勤部,批号20000312。
    1. 6试验动物 健康小白鼠(30—35g)50只,购自第四军医大学实验动物中心。
     
    2. 方法
     
    2. 1 病原分离
     
    将所采病料分别涂片,革兰氏染色镜检,然后,分别接种鲜血琼脂平板。37℃需氧培养24h后,挑取可疑菌落接种于匹克氏增菌液,37℃培养24h后,革兰氏染色,显微镜检查,再接种血清肉汤,纯化后放置4℃,冷藏备用。
    2.2 分离菌株的鉴定
    2.2.1生化试验
    随机抽取上述分离菌血清肉汤培养物3#、8#、13#、15#,分别接种于蔗糖、山梨醇、棉实糖、葡萄糖、甘露糖、蕈糖、乳糖、菊糖、水杨苷、马尿酸钠培养基,37℃培养24h后,观察其对糖的利用情况。
    2.2.2血清学鉴定
     
    将3#、8#、13#、15#菌经缓冲肉汤培养8h,通过3000r/min离心10min,PBS洗涤2次,用Ph7.2 的0.01mol/L PBS制成 1*10 10~2*10 10细菌悬液。取1滴上述细菌悬液与适当的抗血清在洁净玻片上混匀,立即观察凝集现象。同时,设立细菌悬液对照及血清对照。
     
    2.3 致病力及保护力试验
    2.3.1菌落形成单位的测定 按常规方法进行[9]
    2.3.2致病力试验
    无菌吸取上述血清肉汤培养物(含菌量5.0*10 8CFU/ml)以0.1ml /只、0.2ml/只、 0.3ml/只、 0.4ml /只、0.5ml/只分别腹腔注射小白鼠2只,观察其死亡时间和数量,测定其最小致死量。再将上述血清肉汤培养物腹腔注射小白鼠,小白鼠共14只,分7 组。第一组,每只小白鼠注射3#菌0.2ml,第二组每只注射8#菌0.2ml,第三组每只注射3#、8#菌各0.1ml,第四组每只注射13#菌0.2ml,第五组每只注射15#菌0.2ml,第六组每只注射13#、15#菌各0.1ml,第七组每只注射无菌血清肉汤1.0ml。以上各组分别饲养观察其死亡时间及数量。
     
    2.3.3保护力试验
    将3#、8#、13#、15#血清肉汤培养物分别接种于18 cm鲜血平板。37℃培养24h后,收菌,用麦氏比浊管比浊,适当稀释,然后用0.3%甲醛灭活;37℃作用24h;作无菌检验。然后分别腹部皮下接种小白鼠2只,0.4ml/ 只。10天后,再分别人工感染,0.2ml/只。
     
    2.3.4细菌回收试验
    对致病力试验出现症状及死亡小白鼠剖检,并采集病料,进行分离。
     
    2.4药敏试验
    采用纸片扩散法,用无菌棉签蘸取分离菌的血清肉汤培养物,均匀涂布于9cm鲜血平板;待稍干后,用无菌镊子将各种药敏纸片分别平贴在培养基表面,4℃2h使药物扩散,然后置37℃培养20—24h,观察结果。结果按抑菌圈直径大小和各抗菌药的具体标准,评定为高度敏感、中度敏感或耐药。结果评定参照表1。
    表 1 各种抗菌药物的抑菌圈与敏感标准
    3.结果
    3.1分离细菌的培养特性及形态特征
    3.1.1培养特性
    37℃培养24h后,所采的12份病料在鲜血琼脂平板上形成表面光滑、隆起的灰绿色小菌落,外层有明显的β溶血环。该菌在匹克氏增菌液中底部有沉淀,在血清肉汤中先均匀浑浊,后在试管底部形成沉淀,上部澄清,不形成菌膜。
    3.1.2染色特性
    关节液、鲜血琼脂、匹克氏增菌液及血清肉汤培养物涂片、革兰氏染色、显微镜检查为革兰氏阳性,在关节液、鲜血琼脂培养物中多呈单个、双球或短链状排列,在匹克氏增菌液及血清肉汤培养物中多呈长链状。
    3.2生化试验结果(见表2)
    表2 分离菌生化试验结果
    判定标准:“+”表示大多数(90%—100%)菌株为阳性;“-”表示大多数(90%—100%)菌株为阴性。
     
    表2表明分离的3#、8#、13#、15#菌的生化反应结果均符合猪链球菌的生化特性,说明分离的菌均为猪链球菌。
    3.3 血清学鉴定结果
    将3#、8#、13#、15#细菌悬液与1/2及2型抗血清混合,立即可见明显的凝集现象,但不与1型及其他型抗血清出现凝集。直接挑取细菌菌落与血清混匀,也能得到一致结果。阴性对照均未见凝集现象。
    3.4 致病力试验结果及保护力试验结果
    3.4.1致病力试验结果
    第一组、第二组小白鼠注射血清肉汤培养物48h内均未见死亡,第三组48h内有一只死亡,第四组、第五组、第六组在注射血清肉汤培养物18h内全部死亡。死亡后,小白鼠皮肤发绀,剖检肝、脾、肺、心出血,呈败血症。第七组健活。由于第一、二、三组死亡数量非常少,所以,再用相同剂量分别背部皮下接种小白鼠各2只,48h后处死,剖检发现注射部位有直径0.9~1.1cm的脓肿,浓汁呈黄绿色。
    3.4.2保护力试验结果 免疫的小白鼠再经攻毒后均未发病。
    3.5细菌回收试验结果
    将上述死亡及发病的小白鼠剖检采集病料,进行细菌分离、生化试验及血清学鉴定,能得到原分离菌。
    3.6药敏试验结果(见表3)
     
    表3 药敏试验结果
     
    表3表明,结果敏感的药物依次是:头孢菌素、青霉素;中度敏感的依次是:洁霉素和卡那霉素;而对土霉素、链霉素、庆大霉素具有抗药性。
     
    4.分析与讨论
     
    4.1 猪链球菌(Streptoccus suts)是危害养猪业的一种重要病原菌。80年代初,加拿大由猪链球菌引起的疾病开始增加。那时仅检出9种夹膜血清型,其中2型是最常见的。
    4.2 猪链球菌病在临床上有败血型、脑膜脑炎型、关节炎型支气管炎型等。过去屡有败血型猪链球菌的报道,而关于集约化养猪场关节炎型链球菌病的报道较少。本次试验从患关节炎猪的关节液中成功的分离出了猪链球菌。另外,岐山种猪场,约有60%的仔猪流行关节炎,严重者可发生败血症而死亡,给种猪场造成巨大的经济损失。所以,研究本病可为生产中防制本病提供理论依据。
     
    4.3 病猪和带菌猪是本病的重要传染源。病猪的鼻液、尿液、肌肉、内脏和关节内均带有病原体,所以,我们建议,首先应加强对健康猪的免疫。另一方面,在发病后,加强病猪和健康猪的隔离,根据实验室所做的药敏试验结果,配合药物治疗,建议用头孢菌素、青霉素、洁霉素等药物治疗。岐山县种猪繁育场采纳我们的建议后,首先对所有的未发病仔猪用灭活疫苗免疫接种,对已发病的猪用青霉素等药物配合治疗。另外,注意卫生管理。目前该病已得到有效的控制。
     
    4.4 从致病力试验结果可以看出,引起猪关节炎的猪链球菌的致病力较小,而引起败血症的猪链球菌的致病力较强。但通过生化试验和血清学鉴定,它们又是同种细菌且血清型也相同。为什么同种血清型的猪链球菌的致病力差别很大?这个问题还有待于进一步研究。
    作者:朱凤才 杨华富 胡晓
    参考文献
     [1] 杨本升,刘玉斌,苟仕金等. 动物微生物学. 吉林科学技术出版社,1995
    [2] 张庚华.猪链球菌感染最新研究进展.国外兽医学—畜禽疾病,1995,16(2):31
    [3] 黄毓茂,黄引贤.2型猪链球菌的血清学鉴定.中国兽医学报,1995,15(1):63—65
    [4] Gottschalk M.J Clin Microbiol,1989,27:2633—2636
    [5] Higgins R et al.Can J vet Res,1990,54:170—173
    [6] Sanford S E.JAVMA,1982,181:673—676
    [7] Wiadsor.Vet Rec,1977,101:378—379
    [8] 李健强. 兽医微生物学实验与实习指导.西北农业大学,1996
    [9] 张彦明,贾靖国,刘安典.动物性食品卫生检验技术.西北大学出版社,1996
    [10] 蔡宝祥.家畜传染病学.北京,中国农业出版社,1998
    [11] 甘肃农业大学主编,兽医微生物学.北京,中国农业出版社,1982
    [12] 刘荣标.兽医微生物学(上).台北,艺轩图书出版社,中华民中73 年
    [13] 郑明球.家畜传染病学实验指导.北京, 中国农业出版社,1999
    [14] 甘肃农业大学主编.兽医微生物学(第二版).中国农业出版社,1998
    [15] 郝天斌,陈雨田.猪非溶血性关节炎型链球菌病的诊治.中国兽医科技.1999,29(3):34—35
    [16] 陈书琨,林庆燕.猪链球菌生化突变株的分离与鉴定
    [17] 汪诚天,叶祝年,一支方等.兽医实验手册.上海科学技术出版社,1984

     

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