【摘要】 目的探讨酵母菌发酵对川乌、附子(黑顺片)中总生物碱含量的影响。方法采取酵母菌直接发酵和以面粉为基质进行酵母菌扩增,之后再与川乌、附子混合两种发酵方法,水煎提取、测定总生物碱含量和浸膏得率。结果酵母菌直接发酵生物碱含量最高,酵母菌+面粉再与川乌、附子混合发酵后生物碱含量略低,但浸膏得率最高,两种方法发酵均高于传统水提法。结论酵母直接发酵川乌、附子能明显提高总生物碱含量和浸膏得率。
【关键词】 川乌; 附子(黑顺片); 酵母发酵; 总生物碱; 浸膏得率
川乌为毛茛科乌头属植物乌头的干燥主根, 具有祛风除湿,散寒止痛的功效,附子为子根,具有回阳救逆,助阳补火,散寒止痛的作用。川乌、附子两药材同源,均为临床常用品。川乌、附子的主要成分之一生物碱是祛风除湿、散寒止痛的有效成分,同时又是导致中毒的成分,由于乌头碱致毒事件频频发生,制约了乌头属中药的应用[1],《中国药典》2005 版规定川乌、草乌的用量减至
1 材料与仪器
1.1 材料制川乌、附子(黑顺片)均购自河北安国长安药材行,经联合大学生物化学工程学院制药工程教研组鉴定为正品;安琪高活性干酵母,安琪酵母股份有限公司产品;蛋白胨、酵母浸粉、琼脂粉,北京奥博星生物技术有限责任公司产品;葡萄糖,北京化学试剂公司产品;溴甲酚绿(BCG)试液依照2005年版《中国药典》配制;乌头碱对照品,中国药品生物制品检定所产品,批号:11072-200410。
1.2 仪器超级洁净工作箱DL-CJ-2ND(北京东联哈尔仪器制造有限公司);立式压力整齐灭菌器LS
2 方法与结果
2.1 面粉发酵粉碎川乌、黑顺片至1020目,以少量水浸泡川乌、黑顺片粉末。取干酵母
2.2 酵母菌发酵YPD液体培养基:蛋白胨
YPD固体培养基:蛋白胨
酵母菌活化培养:固体培养基高压灭菌后,倒入平板,23 h凝固,待用。用少量无菌水溶解干酵母成膏状,挑取膏状酵母,接种后放入
酵母菌扩大培养:挑取已活化的菌体,深入液体培养基中轻轻搅拌,于
川乌、黑顺片发酵:无菌条件下,将活化培养的200 ml酵母菌悬液分别与高压灭菌的川乌
2.3 提取分别取发酵前后的川乌、黑顺片各
2.4 总生物碱检测
1-样品;2-标准品;3-阴性样品
图1 乌头碱-BCG紫外可见光谱
2.5 干浸膏含量测定分别取发酵前后的川乌、黑顺片各
2.6 川乌和附子中总生物碱含量测定精密量取按“2.3”项下制备的9种提取液,按“
3 讨论
微生物发酵已成为中药现代化研究的重要内容之一,利用中草药发酵已从单味药涉及到复方且取得显著成果,成药片仔癀即是用麝香、牛黄、蛇胆、三七等名贵中药的微生物发酵物,为临床退黄、消肿的良药[5]。酵母无毒,生长繁殖快,培养基和培养条件简单,发酵能力强,因此本研究以川乌和黑顺片为基质进行酵母菌发酵,结果表明酵母菌发酵川乌+附子总生物碱含量(0.39 mg/g)明显高于其它组合,而两种发酵方法均高于未发酵的对照组,由此推断,酵母发酵可使川乌、附子中总生物碱含量增加。微生物可利用中药材为营养进行分裂、生长、代谢和繁殖,在代谢过程中分泌蛋白酶、纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶、淀粉酶等几十种胞外酶进入培养基,使细胞破裂,细胞间隙增加,减小细胞壁、细胞间质等传质屏障对有效成分从胞内向提取介质扩散的传质阻力,使有效成分提取率明显升高[6]。酵母菌直接发酵上述药材总生物碱增加显著,可能是因为酵母菌直接以川乌和黑顺片中的成分为营养源,发酵充分、完全,而以面粉为基质进行酵母菌扩增,之后再与川乌、附子混合发酵后总生物碱含量较酵母菌直接总生物碱含量低,因为酵母菌常生长在含糖(或盐)量较高的环境中,可优先利用面粉中的糖类为营养[7],而对药材的利用率降低,同时加入面粉会影响生物碱的溶出,故导致其对川乌和黑顺片的利用率相对较低,酵母菌+面粉发酵组干浸膏得率最高(39.5%),是否与加入的面粉有关有待于进一步研究,由于除沉过程对有效成分有影响,因此本研究认为酵母菌直接发酵程序简单、操作方面、总生物碱较高,值得深入研究。
微生物发酵可使中药材含量和成分发生变化,如酵母菌发酵大黄后,总蒽醌含量略有降低,结合型蒽醌含量降低,但游离型蒽醌含量增加6倍左右[8]。川乌和黑顺片中的生物碱-双酯型二萜类生物碱,如乌头碱、次乌头碱、新乌头碱,既是有效成分,也是毒性成分,双酯型生物碱经转化可分解成毒性较小的单酯类生物碱[9]。本研究酵母发酵川乌和黑顺片总生物碱增加显著,其中双酯型生物碱与单酯型生物碱的含量变化规律有待于进一步研究,如何通过优化工艺达到减毒增效、提高总生物碱含量继而开发外用止痛剂,将是本研究下一步要解决的问题。
作者:葛喜珍 刘洁 苏建树,郑来丽,李利辉,赵有玺,田平芳《时珍国医国药》
【参考文献】
[1] Ange‘lica M,Bello-Ram,reza, Alejandro A. Nava-Ocampo. A QSAR analysis of toxicity of Aconitum alkaloids[J].Fundamental & Clinical Pharmacology,2004,18:699.
[2] 杨 明,刘小彬,黄庆德.附子甘草配伍减毒增效机理探析[J]. 时珍国医国药,2003,14(4):197.
[3] 葛喜珍.微生物发酵在中药研究中的应用[J].时珍国医国药,2008,19(2):386.
[4] 陈其华.中成药中乌头总碱的酸性染料比色测定法[J].中国中药杂志, 1991, 16(8): 476.
[5] 陈海滨,吴春敏,刘洪旭.片仔癀质量标准研究[J].海峡药学,2006,18(1):24.
[6] 王兴红,李旗德,曹秋娥.微生物发酵中药应成为中药研究的新内容[J].中草药,2001,32(3):267.
[7] 明儒成,聂海玲,封新平.一种新组分酵母菌培养基的研制及应用[J].生物技术,2008,18(2):49.
[8] 戴万生,赵荣华.发酵法对大黄蒽醌类成分含量的影响[J].云南中医药杂志,2005,26(1):38.
[9] Thomas Y.K. Chan. Incidence of Herb-Induced Aconitine Poisoning in
下一篇:侵袭性肺曲霉菌病的临床分析