方法一
氯化铯密度梯度离心纯化法(用密度梯度来做,首先我们需要什么样的转头,角式的,或者是甩平转头,一般用甩平转头。在准备密度梯度时,对病毒的浮力密度要清楚是多少,具体数字,然后我们才能知道用多大浓度的梯度介质。)
1、病毒浓缩
(1)PEG沉淀病毒:在收集到的病毒上清加入终浓度5%的PEG6000,
(2)三氟三氯乙烷抽提:取PEG浓缩的病毒液,加入等体积的三氟三氯乙烷(三氟三氯乙烷是有机溶剂,可以去除许多细胞中的杂质(如脂类),同时因为rotavirus没有包膜,所以能抵抗三氟三氯乙烷。)抽提一次,12,000rpm,
2、CsCl密度梯度离心
取病毒液,与CsCl制成56%的乳化液,装入5ml梯度离心管中,水平转头50,000rpm,
方法二
蔗糖密度梯度离心:
1、配制60%、45%、30%、15%的蔗糖(蔗糖M/水V),还有60%、50%、40%、30%、15%的蔗糖溶液也可以。加热溶解之后,0.22UM滤器过滤,4度保存备用,注意:一定要配的准确。
2、蔗糖密度梯度离心管,大和小两种。
3、小管离心管,每种蔗糖溶液加2~2.5ml,依据你的病毒液体有多少。先加密度小的蔗糖溶液,在加密度大的,依次类推,加的时候要温柔呵呵!用于加蔗糖梯度的注射器用干净\高压的玻璃注射器(2.5ML), 一次性塑料注射器密封性不好和注射器芯容易变形, 加蔗糖和样品不准,针头是比较长的,至少有
4、加蔗糖溶液有专门的针头,比蔗糖离心管长。
5、要做这个试验的时候,提前把离心管洗干净。
方法三
Preparation of Virions Containing Uncleaved VP4
1、Infect MA104 cells at a high MOI(3–10PFU/cell)with trypsin-activated virus.
2、Wash the cell sheet several times with serum-free medium following adsorption.
3、Maintain the cells in trypsin-free medium containing 1μg/mL aprotinin or 0.5μg/mL leupeptin.
4、Harvest the cells once the CPE has reached 70–80% (24 h post infection).
Purification of Triple-Layered Virions
1、Combine the lysate with an equal volume of trichlorotrifluoroethane, and homogenize the mixture with a Sorvall Omni-mixer for three 1min cycles on ice.
2、Centrifuge the homogenates at low speed to separate the organic and aqueous phases (
3、Pellet the virus particles from the aqueous phase by centrifugation at
4、Resuspend the pellet in TBS, and add CsCl to the virus suspension to achieve a density of
5、Centrifuge the mixture at
6、Inspect the gradients in a darkened room with an inverted light source, to reveal two bands.
7、Recover the virus from the gradient by puncturing the bottom of the centrifuge tube with a 21-gage needle, and collect drops containing TLPs and DLPs, respectively,into separate tubes.
8、Remove the CsCl by dialyzing the virus extensively against TBS at
9、Store the dialyzed samples at
Tris-buffered saline(TBS):
用完整的病毒作为抗原,做ELISA试剂的最低层,不需要纯化病毒。只需包被RV作检测抗体之用,这是间接法ELISA。细胞培养的病毒用包被缓冲液做1:40稀释(病变出的好,这个稀释度就跑不了,我们实验室做了若干年了),每孔100ul,过夜成了。如果不放心,可以高速离心后再过G200柱,这个方法比超离方便多了。病毒从凝胶空隙最早流出,而杂蛋白进入孔内出来的缓慢。ELISA不需要太纯的病毒。不知道是SA11还是Wa株?前者病变非常典型,后者病变缓慢,如果不放心1:40稀释,可以用有限稀释方法滴定抗原用量。
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