一 实验目的
1、掌握厌氧菌的分离、培养及活菌计数的一般方法。
2、观察双歧杆菌的形态特征并了解双歧杆菌的生长特性。
3、了解双歧杆菌鉴定的一般方法。
二 基本原理
厌氧微生物在自然界分布广泛,种类繁多,其生理作用日益受到人们的重视。双歧杆菌是专性厌氧菌,对氧气非常敏感,因此,双歧杆菌的分离、培养及活菌计数的关键是提供无氧和低氧化还原电势的培养环境。
双歧杆菌的最适生长温度
双歧杆菌的培养方法很多,如厌氧箱法、厌氧袋法、厌氧罐法。这些方法都需要特定的除氧措施,操作步骤多,较繁琐。本实验介绍的是一种简便的试管培养法——亨盖特厌氧滚管技术,亨盖特厌氧滚管技术是美国微生物学家亨盖特于1950年首次提出并应用于瘤胃厌氧微生物研究的一种厌氧培养技术 。以后这项技术又经历了几十年的不断改进,从而使亨盖特厌氧技术日趋完善,并逐渐发展成为研究厌氧微生物的一套完整技术,而且多年来的实践已经证明它是研究严格、专性厌氧菌的一种极为有效的技术。该技术的优点是:预还原培养基制好后,可随时取用进行试验;任何时间观察或检查试管内的菌都不会干扰厌氧条件。
目前,双歧杆菌鉴定的方法有很多种。近年来兴起的一种新的RAPD等分子生物学技术对双歧杆菌进行基因指纹图谱的构建,分析不同双歧杆菌种间存在的同源性和多态性;RAPD技术也可用于双歧杆菌菌种鉴定及分型。一般来讲,我们都应用适合鉴定所有厌氧菌的方法,主要包括双歧杆菌特定酶的检测、乙酸、乳酸等有机酸的测定、糖发酵试验和其他相关指标等。
三 实验用具
高纯氮气 厌氧管 注射器 培养箱 冰块 水浴锅 镊子 记号笔 MRS培养基 细菌生化微量鉴定管 酒精棉球 瓷盘 振荡器 铜柱除氧系统 定量加样器 恒温水浴 载玻片 显微镜 恒温培养箱 超声波破碎仪 滤纸 层析缸 酒精灯 封口膜 厌氧罐 等。
四、实验方法与步骤
1 铜柱系统除氧
铜柱是一个内部装有铜丝或铜屑的硬质玻璃管。此管的大小为40~
2 预还原培养基及稀释液的制备
制作预还原培养基及稀释液时,先将配置好的培养基和稀释液煮沸驱氧,而后用半定量加样器趁热分装到螺口厌氧试管中,一般琼脂培养基装4.5~5.0mL,稀释液装9mL,并插入通N2气的长针头以排除O2。此时可以清楚的看到培养基内加入的氧化还原指示剂—刃天青由蓝到红最后变成无色,说明试管内已成为无氧状态,然后盖上螺口的丁烯胶塞及螺盖,灭菌备用。
3 分离
(1)编号
取五支无菌水试管,分别用记号笔标明10-1、10-2……10-5。
(2)稀释
在无菌条件下,用无菌注射器吸取1mL混合均匀的液体样品,加入装有预还原生理盐水的厌氧试管中,用震荡器将其混合均匀,制成10-1稀释液。用无菌注射器吸取1mL10-1稀释液至另一装有9mL生理盐水的厌氧试管中,制成10-2稀释液。依此进行10倍系列稀释,至10-7,制成不同样品稀释液。通常选10-5、10-6、10-7三个稀释度进行滚管计数。
(3)滚管分离
a、滚管
将无氧无菌的琼脂培养基在沸水浴中溶化,置46
b、分离
生成的菌落需挑取出来,镜检其形态及纯度。如尚未获得纯培养物,需再次稀释滚管,并再次挑取菌落,直至获得纯培养物为止。待挑取的单菌落预先在放大镜下观察确定,做好标记。然后将培养基试管固定于适当的支架上,打开试管胶塞,同时迅速将气流适当、火焰灭过菌的氮气长针头插入管内。同时,另一液体厌氧管去掉胶塞插入另一灭过菌的通气针头。将准备好的弯头毛细管小心插入固体培养基内,找准待挑菌落,轻轻吸取,转移至液体试管内,加塞。
4 计数并镜检
(1)计数
液体纯培养物经系列稀释后,按上述滚管法培养。然后对固体滚管计数,计算每克或每毫升样品中含有的双歧杆菌数量。公式如下:
双歧杆菌数量cfu/g(mL)样品=0.1mL滚管计数的实际平均值×10×稀释倍数
(2)镜检
挑取特征性菌落制片,革兰氏染色后镜检,观察菌体形态。
5 菌种鉴定
⑴ 双歧杆菌特定酶的检测
利用果糖-6-磷酸盐对分离得到的菌种进行果糖-6-磷酸盐磷酸酮酶(F6PPK)的测定,初步确定菌种是否为双歧杆菌属。F6PPK测定的操作如下:
① 将从样品中分离出的双歧杆菌培养于厌氧液体改良MRS培养基中
② 将菌液4400 rpm离心10 min,收集菌体,缓冲液ⅰ洗涤2次,最后溶于约4 mL缓冲液ⅰ中,制成细菌悬液。
缓冲液
ⅰ 现用现配。取
③ 用超声波粉碎仪,400 W条件下;每处理5 s、间隔5 s,超声粉碎8 min,至菌体溶液呈半透明。
④ 破碎后,取0.5 mL 于离心管中,加试剂ⅱ和ⅲ各125 µL,
ⅱ 6 mg/mL氟化钠加10 mg/mL 碘乙酸钠。
ⅲ 果糖-6-磷酸盐80 mg/mL水溶液。
⑤ 加试剂ⅳ 0.750mL, 室温10 min。
ⅳ 现用现配。盐酸羟胺139 mg/mL。酸性极强,用氢氧化钠中和至pH6.5。
⑥ 加试剂ⅴ和ⅵ各500 µL, 室温5 min。
ⅴ 三氯乙酸(TCA)水溶液
ⅵ
⑦ 加试剂ⅶ 500 µL, 显色。红褐色或红紫色为阳性,黄色为阴性。
ⅶ
⑵ 乙酸、乳酸等有机酸的测定——纸层析法
① 层析滤纸的制备——将层析滤纸剪成
② 配制展开剂——正丁醇:甲酸:水=80:15:5
③ 配制标准液——配制1.5%的乳酸、1.5%的乙酸溶液
④ 制备待测样品——将菌种
⑤ 点样——用毛细管分别吸取发酵液,多次点样于滤纸条上,样点直径不宜超过
⑥ 层析——将点好样的层析纸放入,使点有样品的一端浸在展开剂中,但不可浸及样点。观察展开情况,待展开剂前沿到达离层析纸另一端约
⑦ 显色——以3%溴甲酚蓝酒精溶液为显色剂,待层析液挥发之后,向层析滤纸喷洒并计算Rf值。
注释:物质被分离后在纸层析图谱上的位置是用Rf值 (比移值 Rf value 又称Rf值) 来表示:
Rf = 原点到层析中心的距离 / 原点到溶剂前沿的距离
在一定的条件下某种物质的Rf值是常数。Rf值的大小与物质的结构、性质、溶剂系统、层析滤纸的质量和层析温度等因素有关,是一个定性分析的重要参数。
⑶糖发酵试验
糖发酵实验是最常用的生化反应,在肠道细菌鉴定上尤为重要。绝大多数细菌都能利用糖类作为碳源和能源,但是它们在分解糖的能力上有很大差异,有些细菌能分解糖并产酸(如乳酸、醋酸、丙酸等)和气体(如氢、甲烷、二氧化碳等);有些细菌只产酸不产气。例如大肠杆菌能分解乳糖和葡萄糖产酸并产气;伤寒杆菌能分解葡萄糖产酸不产气,不能分解乳糖;普通变形杆菌分解葡萄糖产酸产气,不能分解乳糖。酸的产生可以利用指示剂来断定。在配制培养基时预先加入溴甲酚紫[pH5.2(黄色)—6.8(紫色)],当发酵产酸时,可使培养基由紫色变为黄色。气体的产生可由发酵管中倒置的德汉氏小管中有无气泡来证明。
本实采用现成的细菌生化微量鉴定管 ,鉴定管的种类如下:
乳糖 麦芽糖 甘露糖 甘露醇 蔗糖 阿拉伯糖 D-核糖 木糖(木胶糖) 半乳糖 松三糖 山梨糖 淀粉 水杨素 葡萄糖酸盐 草糖(海藻糖) 血清菊糖 棉子糖 果糖 蜜二糖 纤维二糖
具体实验步骤:
① 将菌液进行适当稀释,之后在无菌环境下,取一定量的稀释液注入生化鉴定管中,用无菌封口膜封口。
② 将接种后的鉴定管放入厌氧罐中,充足氮气后放入
③ 24h后观察各管中液体变颜色情况,若变色则为阳性,反之阴性,对照凌代文编著的《乳酸细菌分类鉴定及试验方法》“鉴别双歧杆菌属内种的特征”表即可初步确定其种别。
五 注意事项
1 注射器在使用前必须经过
2 注意无菌操作,保持手和培养管的清洁。每次接种前需用酒精棉球将厌氧管盖子擦一遍。
3 用注射器吸取菌悬液注入固体培养基后,如需再次吸取,应快速将注射器插入厌氧管中,以防止针头污染。
六 实验结果记录
(下列表格供参考)
表一 双歧杆菌培养过程中菌落计数
稀释度 |
10-4 |
10-5 |
10-6 | |||||||||
菌落数 |
1 |
2 |
3 |
平均 |
1 |
2 |
3 |
平均 |
1 |
2 |
3 |
平均 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
| |
每毫中 总活菌数 |
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表二 双歧杆菌菌株属的鉴定指标与鉴定结果
鉴定项目 |
试验结果 |
鉴定项目 |
试验结果 |
革兰氏染色 |
|
乙酸含量 |
|
细胞形态 |
|
乳酸含量 |
|
F6PPK |
|
乙酸:乳酸 |
3:2 |
表三 双歧杆菌菌株糖醇发酵试验结果
试验项目 |
结果 |
试验项目 |
结果 |
D-核糖 |
|
甘露糖 |
|
L-阿拉伯糖 |
|
果 糖 |
|
乳 糖 |
|
半乳糖 |
|
纤维二糖 |
|
蔗 糖 |
|
松三糖 |
缺 |
麦芽糖 |
|
棉子糖 |
|
海藻糖 |
|
山梨醇 |
|
蜜二糖 |
|
淀 粉 |
|
甘露醇 |
|
葡萄糖酸钠 |
|
菊 糖 |
|
木 糖 |
|
水杨苷 |
|
注:表中+表示待测菌株阳性,-表示待测菌株阴性
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