1.形态和理化学特性　　研究猪瘟病毒的主要困难，一是除猪肾细胞，还没有找到更好的增殖 病毒的 敏感细胞(虽然能在多种细胞内增殖)，二是猪瘟病毒在细胞培养物中不产生肉眼可见的细胞 病变。现在用于增殖猪瘟 病毒的最好细胞，依然是原代和继代猪肾细胞，例如PK15细胞。在PK15细胞中增殖的病 毒，用聚乙二醇(PEG)及硫酸铵沉淀后，再经超速离心及梯度密度离心浓缩和提纯，  即可获得纯化的病毒制品。　　病毒粒子的直径为34～50nm(图224)，有二十面体对称的核衣壳， 内部核心直径 约30nm。病毒粒子略呈圆形，具有脂蛋白囊膜。在蔗糖密度梯度中的浮密度为115～1 16g/cm。等电点是48。从电镜照片上观察，可见病毒粒子表面具有脆弱的纤突结构。

　　猪瘟病毒的基因组为单股线状RNA，分子量约为4×106Da。Meyers等和Moo rmann等分别对Alfort株和Brescia株进行了分子克隆和全序列测定，发现Bres cia株基因组长为12 283个nt，而Alfort株则为12 284个nt， 它们仅含有一个长开放 阅读框架，编码3 898个氨基酸残基，氨基酸同源性达93%。涂长春等完成了石 门株部分cDNA的分子克隆和序列分析，并与Brescia株和Alfort株进行了比较。　　HCV含有四种结构蛋白，其中3种是糖蛋白，但对病毒的非结构蛋白了解不多。目前关于 病毒蛋白的大量研究并非源于同一株病毒，加上电泳结果不尽一致, 各种病毒的蛋 白分子量也不尽相同，结构蛋白由N端到C端为P14/E0/E1/E2。 P14为非糖基化的核衣壳蛋 白，后三种为组成病毒囊膜结构的3种糖蛋白,E0分子量大约在42～48kDa之间， E1分子 量在25～33kDa之间，E2分子量在51～55kDa之间。　　猪瘟病毒不耐热，56℃ 60分钟使其灭活。60℃ 10分钟使其完全丧失致病力。　　猪瘟病毒在pH5～10稳定，但不耐受pH3。猪瘟病毒在pH29于室温下5小时，滴度由 1055下降到1020TCID50。MgCl2在50℃没有稳定作用。　　病毒对乙醚、氯仿和去氧胆酸盐敏感，迅速丧失感染性。对胰蛋白酶有中等度的敏 感性。二甲基亚砜(DMSO)对病毒囊膜中的脂质和脂蛋白有稳定作用。10% DMSO液中的猪 瘟病毒对反复冻融有耐受性。

 

　　2.抗原性　　猪瘟病毒只有一个抗原型。中国兽药监察所在选择制苗用毒种时， 发 现国内外7 株猪瘟病毒在猪和兔都有交叉免疫性。但自1976年以来，美国、法国和日本的一些学者根 据血清中和试验，证明猪瘟病毒具有血清学变种。美国较早从非典型猪瘟病例分离到致 病力低的毒株，例如Mengeling报道的“331慢性猪瘟毒株” 是从美国衣阿华州一次流行中分离获得的。此株病毒在实验感染时只产生持续性感染。 比较331株和强毒Ames株的抗原性，也发现不尽一致(Dirtle，1971)。 法国也证明 猪瘟病毒存在血清学变种，并认为至少有两个血清学亚组：I组包括许多强毒株和绝大多数 的疫苗用弱毒株，Ⅱ组包括引起慢性猪瘟的低毒力毒株， 如美国的331株以及通常分离 的几株慢性猪瘟病毒。这些低毒力毒株对猪的免疫力，与弱毒疫苗株病毒不同，通常不能产 生明显的血清中和抗体，在用强毒攻击时，往往呈现厌食和高热等临床反应。但是 C株和Thiveoval株等弱毒疫苗却可完全保护猪体不受这些血清学变种的感染。　　猪瘟病毒和牛腹泻粘膜病病毒具有共同的可溶性抗原。 应用去垢剂从感染细胞中 分离猪瘟病毒糖蛋白，证明其在血清学上与BVDMD病毒有交叉反应，而且还可使猪抵抗 猪瘟强毒的攻击。　　某些国家在猪瘟流行病学调查和防制工作中发生的一个问题，就是猪群中存 在抗BVDMD病毒的抗体，但滴度不高，例如爱尔兰已无猪瘟病毒感染，但在牛和猪混牧 的牧场中出现BVDMD抗体的阳性率高达28%。据推测，这是猪与牛和绵羊接触的结果。  澳大利亚在消灭猪瘟几年后，仍在一些猪中发现猪瘟中和抗体，且在这些猪中，抗BVD MD病毒的血清抗体的滴度更高。试验证实，猪在接种无毒力的猪瘟病毒以后，仅产生对 这株病毒的中和抗体，随后再攻击以猪瘟强毒，使其对猪瘟病毒的抗体增加，但对BVD MD病毒仅有很低或者根本没有抗体反应。相反，猪在接种TVM2株BVDMD病毒以后，虽不 产生任何临床症状，但却可以产生一定程度的抗猪瘟强毒攻击的保护力。有人认为，BV DMD病毒可能是猪瘟病毒的一个特殊的血清学变种：对猪似已减毒， 但充分适应了牛 和绵羊。